慢病毒濃縮試劑（5x）說明書
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產品詳情
貨號 | 規格 | 價格 |
78EG10002-100ml | 100ml | ￥750.00 |
產品描述
慢病毒濃縮試劑（5x）是針對慢病毒富集而優化的聚合物材料，它提供了一種簡單、快速、高效的慢病毒顆粒濃縮方法。只需將慢病毒上清液與慢病毒濃縮試劑按比例混合，短時間孵育，采用標準離心機進行離心即可得到慢病毒顆粒沉淀。超濾、超速離心法等病毒濃縮法，操作時間長，步驟繁瑣，且通常會有細胞碎片和血清蛋白等的污染，病毒純度低。使用本產品進行病毒濃縮后，病毒滴度可提高10-100倍，病毒回收率最高可達約90%，病毒損失少，并且病毒在濃縮過程中能保持病毒生物活性。整個實驗過程可在4小時內快速完成，無需超速離心即可獲得出色的回收效率。
產品特點
簡單快速——操作簡單，無需超速離心，確保活性，實驗耗時不超過4小時
濃縮效果優——病毒滴度可濃縮10-100倍以上
回收效率高——慢病毒回收效率高達90%以上
應用范圍廣——適用于所有類型的慢病毒顆粒
使用方法
使用方法
1.將含有慢病毒顆粒的培養基轉移至無菌容器中，300xg離心10分鐘以除去細胞碎片。
?為保證病毒活性，濃縮前的病毒上清液應盡量選擇新鮮收集的病毒原液。
2.使用0.22μm過濾器過濾上清液至無菌容器中。
?如果使用濾膜過濾，推薦使用低蛋白結合力的纖維素醋酸酯或聚醚砜（PES）膜，不推薦使用硝酸纖維素膜（NC）。
3.向每4體積含慢病毒的上清液中加入1體積慢病毒濃縮試劑（5x），使慢病毒濃縮試劑（5x）稀釋為工作濃度（1x）。
4.將上述混合物于4℃搖床中慢速孵育3小時或過夜。
?慢病毒顆粒在4℃可穩定長達4天。
5.將混合物4℃4000xg離心25分鐘。離心后，慢病毒顆粒可能在容器底部顯示為米色或白色沉淀。
6.小心棄去上清液，4℃4000xg離心5分鐘，再次棄盡殘余液體，應盡量避免吸走沉淀物，該沉淀物即為慢病毒顆粒。
7.用初始體積（原上清液體積）1/10-1/100預冷的慢病毒保存液重懸病毒顆粒，使用移液器小心吹打，重懸慢病毒顆粒。
?重懸病毒沉淀時，吹打操作要輕柔，可選擇慢病毒保存液（LS110R）、Complete medium或FBS重懸慢病毒。
8.小體積分裝慢病毒，儲存于-80℃冰箱或液氮中，留取少量病毒測定滴度。
?應盡量避免慢病毒反復凍融，否則會降低病毒滴度。
實驗案例分析
注意事項
1.為了您的健康安全，請規范操作，穿戴實驗服與手套開展實驗；
2.所有慢病毒操作均需在生物安全柜（BSL2級）中進行；
3.本產品僅供科研使用，請勿用于臨床診斷及治療。
運輸及保存方法
冰袋（wetice）運輸。4℃保存，有效期12個月。
產品描述
細胞周期（cell cycle）是指連續分裂的細胞從一次分裂完成開始到下次分裂為止的全過程，分為間期和分裂期（M期），細胞間期又分為休眠期（G0期）,DNA合成前期（G1期），DNA合成期（S期），DNA合成后期（G2期）整個周期可以表示為：G0-G1-S-G2-M。
本公司生產的細胞周期檢測是通過經典的碘化丙啶染色色 (Propidium iodide staining，PI staining)方法進行周期分析的檢測試劑盒。PI是一種DNA的熒光染料，可以結合雙鏈DNA產生熒光，其熒光強度與DNA的含量成正比。經碘化丙啶染色后假設G0/G1期細胞的熒光強度為1，那么含有雙份基因組DNA的G2/M期細胞的熒光強度的理論值為2，正在進行DNA復制的S期細胞的熒光強度為1-2之間。凋亡細胞由于細胞核發生濃縮以及發生DNA片段化導致部分基因組DNA片段在染色過程中丟失，因此凋亡細胞碘化丙啶染色后呈現明顯的弱染，即熒光強度小于1，在流式檢測的熒光圖上出現所謂的sub-G1峰，即凋亡細胞峰。利用流式細胞儀進行熒光分析從而對DNA進行定量，實現細胞周期檢測。
產品組成
本試劑盒常用于貼壁細胞或者懸浮細胞的培養，如果檢測對象為組織樣品，必須消化成單個細胞后在進行染色檢測，規格為50T，每T可檢測的樣本的細胞數量在10-100萬之間。
名稱 | 規格 | 保存條件 |
染色緩沖液 | 25 mL | -20℃ |
碘化丙啶染色液(20X) | 1.25 mL | -20℃ |
RNase A (50X) | 0.5 mL | -20℃ |
運輸與保存
冰袋運輸，-20℃保存一年。
實驗步驟
1. 細胞樣品的準備：
a. 對于貼壁細胞：收集培養液上清，PBS潤洗細胞一遍，胰酶消化細胞，加入前面收集的培養液終止消化，得到的細胞懸液1000g離心5min收集細胞沉淀備用。
b. 對于懸浮細胞：1000g左右離心3-5 min，沉淀細胞。
（如果細胞沉淀不充分，可以適當延長離心時間或稍稍加大離心力）
2.細胞固定：
（1）向步驟1收集得到的沉淀中加入300 μL預冷的PBS，輕柔吹打混勻，輕柔渦旋的過程中滴加700 μL預冷的無水乙醇，最后于4℃固定30 min或更長時間。通常固定2 h或以上更能保證染色效果，固定12-24h可能效果更佳。
（2）1000g左右離心5 min去除固定液，預冷PBS清洗一遍后再次離心，小心吸除上清，可以殘留約50微升左右的PBS，以避免吸走細胞。輕輕彈擊離心管底以適當分散細胞，避免細胞成團。
3. 細胞染色：
（1）參考下表配制碘化丙啶染色液（配置好的碘化丙啶染色液4℃保存，宜當日內使用）：
名稱 | 1個樣品 |
染色緩沖液 | 0.5 mL |
碘化丙啶染色液(20X) | 25 μL |
RNase A (50X) | 10 μL |
總體積 | 0.535 mL |
（2）每個樣品中加入0.5 mL的碘化丙啶染色液緩慢并充分重懸細胞沉淀， 37oC避光孵育30min。隨后可以4oC或冰浴避光存放。染色完成后宜在24 h內完成流式檢測。
4.流式檢測分析：檢測激發波長為488 nm處紅色熒光，用流式細胞儀對DNA含量進行分析，確定細胞周期變化情況。
注意事項
（1）需自備PBS和70%乙醇，整個過程避光操作。
（2）為了您的安全和健康，請穿實驗服并戴一次性手套。
（3）本產品僅作科研用途！
